(1)剪尾或切开尾静脉采血：需血量很少时采用本法。首先固定动物并露出鼠尾，将尾部毛剪去后消毒，然后浸泡在45℃左右的温水中数分钟，也可用乙醇或二甲苯反复擦拭使尾部血管扩张。再将尾擦干，用剪刀割去尾尖(小鼠1～2mm，大鼠5～10mm)让血液自由滴入盛器或用血红蛋白吸管吸取，采血结束，伤口消毒并压迫止血。也可在尾部作一横切口，割破尾动脉或静脉，收集血液的方法同上，如图1.4。每只鼠一般可采血10余次。小鼠每次可取血0.1ml，大鼠0.3～0.5ml。

(2)针刺鼠尾静脉采血：大鼠用血量不多时(仅做白细胞计数或血红蛋白检查)，可采用本法。固定动物，先将鼠尾用温水擦拭，再用乙醇消毒和擦拭，使鼠尾充血。用7号或8号注射针头，在尾尖部向上数厘米处刺入鼠尾静脉，拔出针头时即有血滴出。如果长期反复取血，应先靠近鼠尾末端穿刺，以后再逐渐向近心端穿刺，然后局部压迫止血。

(3)眼眶静脉丛采血：当需要多次反复采血时，常使用本法。首先用乙醚将动物浅麻醉，采血者的左手拇、示两指从背部较紧地握住小鼠或大鼠的颈部，应防止动物窒息。取血时，左手拇指及示指轻轻压迫动物的颈部两侧，使眶后静脉丛充血。右手持7号针头的1ml注射器或长颈(3～4cm)硬质玻璃滴管(毛细管内径0.5～1.0mm)，使采血器与鼠面成45℃的夹角，由眼内角刺入，针头斜面先向眼球，刺入后再转180℃使斜面对着眼眶后界(图1.5)，刺入深度小鼠约2～3mm、大鼠约4～5mm。当感到有阻力时即停止进针，再将针后退约0.1～0.5mm，边退边抽。若穿刺适当，血液能自然流入毛细管中。当得到所需的血量后，即除去加于颈部的压力，同时将采血器拔出，用消毒纱布压迫眼球30秒，以防止术后穿刺孔出血。若技术熟练，用本法短期内可重复采血均无大困难。左右两眼轮换更好。体重20～25g的小鼠每次可采血0.2～0.3ml；体重200～300g大鼠每次可采血0.5～1.0ml。

(4)心脏采血：鼠类的心腔较小，且心率较快，心脏采血比较困难，故较少采用心脏采血。操作时，将动物仰卧固定于鼠板上，剪去胸前区的皮毛，用碘酒、乙醇消毒皮肤。在左侧第3～4肋间，用左手示指摸到心搏处，右手持带有4～5号针头的注射器，选择心搏最强处穿刺。心脏采血注意要点：①要迅速直接插入心脏，否则，心脏将从针尖移开；②如第一次没刺准，将针头抽出重刺，不要在心脏周围乱探，以免损伤心、肺；③要缓慢而稳定地抽吸，否则太多的真空反而使心脏塌陷。

若做开胸一次死亡采血，先将动物作深麻醉，打开胸腔，暴露心脏，用针头刺入右心室，吸取血液。小鼠约0.5～0.6ml；大鼠约0.8～1.2ml。

(5)颈动静脉采血：先将动物仰位固定，切开颈部皮肤，分离皮下结缔组织，使颈静脉充分暴露，用动脉夹夹住近心端，针尖斜面向上朝远心端刺入静脉，缓慢抽吸。在气管两侧分离出颈动脉，远心端结扎，将针头朝近心端刺入，动脉血压力大，勿需或只需轻轻抽吸。

(6)腹主动脉采血：先用乙醚将动物麻醉，仰卧固定在手术架上，从腹正中线皮肤切开腹腔，将肠管向左或向右推向一侧，使腹主动脉清楚暴露。在腹主动脉远心端结扎，再用动脉夹夹住近心端，然后在其间平行刺入，松开动脉夹，立即采血。

(7)股动(静)脉采血：先由助手握住动物，采血者左手拉直动物下肢，使静脉充盈。或者以搏动为指标，右手用注射器刺入血管。体重15～20g小鼠采血约0.2～0.3ml，大鼠约0.4～0.6ml。