一、实验目的

1．学习大鼠的抓取和固定。

2．熟悉大鼠的麻醉方法。

3．颈部血管神经的分离和血压测定。

二、实验器材

1．3％碘酒和75％酒精、细塑料导管、两根大头针、大鼠固定板、细棉绳、缝合线、干棉球、探针等。

2．生理盐水、1：125U肝素、1％戊巴比妥钠、1：1000肾上腺素。

3．注射器3只、针头3个、眼科小剪、中号有钩镊、眼科弯无钩镊、中号手术剪、中号剪各一把、小烧杯3个、动脉夹1个。

4．二导平衡记录仪一台、压力传感器一套、血压检压计一套。

5．大鼠一只。

三、实验方法

1．动物的麻醉

将大鼠在天平上称重，按30mg／kg体重计算1％戊巴比妥钠的用量，然后抽入2ml注射器内，连好5号针头，依据小鼠腹腔注射方法腹腔注射，若麻药够量，一般5min左右即可麻醉。麻后鼠四肢用细棉绳活扣绑腿，背卧位于大鼠固定板上，再用中号弯剪剪去颈部被毛，3％碘酒和75％酒精消毒(有时也可不消毒)。

2．颈动脉、颈外静脉和迷走神经的分离

右手持中号手术剪打开颈部皮肤约2cm长，用眼科弯无钩摄分开甲状腺体和皮下组织，暴露胸骨、舌骨肌，这时把眼科镊弯头朝下，对准胸骨舌骨肌中央线前后划破被膜，分开左右胸骨舌骨肌，并进一步分开气管两侧的肌肉和结缔组织，便可看到颈动脉搏动，其旁边较细的白色线状物即为动脉伴行的迷走神经，将它们分离之后，在动脉血管上套两根缝合线备用。

大鼠颈外静脉是颈部的主要静脉，它在胸乳突肌及锁骨斜方肌的交界处，在很浅层穿过颈部向心延伸，所以，只要用小镊子挑开胸锁肌上方的组织即可找到颈外静脉，将其与周围组织分离后，穿二根缝合线，用其中一根结扎血管的远心端，另一根提起，用眼科剪剪一小斜口，插入内盛生理盐水的细导管(另一端由大头针堵住)，再用所穿缝合线把血管壁连同插管一起结扎，然后，由此静脉插管注入0.3ml肝素抗凝。

肝素注入后1～2min，即可行动脉插管，先在颈动脉近心端用动脉夹夹住，同时也结扎血管的远心端，之后操作同颈外静脉插管。

3．血压测定

实验动物血压测量方法有两种：一为直接测压法，二为间接测压法。

直接测压法就是用手术的办法把套管直接插入动脉或静脉，然后连通水银(或水)检压计测出血压。间接测压法是用体表脉动瓣音法或脉波等原理而设计的仪器测血压的方法，前者多适用于较小的动物，而后者多用于较大的动物。

这里我们采用直接测压法。

(1)定标：二导平恒记录仪，压力传感器和水银检压计依次接通并通电预热，在检压计一端连一具100ml注射器，调节记录仪笔针指向零点和检压计水银柱的零点，使其平衡，然后用空针管加压使水银柱分别达到50、100、150、200等刻度，分别记录50、100、150、200水银汞柱时的波形和高度，重复1～2次，使其高度和波形一致，即定标完成。

(2)测颈动脉血压：将动物颈动脉插管远离心端的塞子拔下(动脉夹仍然夹住)，使其与传感器接口相连，注意连接时两个接管内都必须充满生理盐水，使接通的管腹中成为一个连续密封的实腔，以避免有气泡产生缓冲作用所致测压误差，然后轻轻打开动脉夹，观察无液体漏出管外时，即可打开动脉夹，开始记录(正常血压80～140mmHg)，描记一段后，可由颈外静脉注射1：1000肾上腺素0.3ml，以观察其升压作用。